Geïmmortaliseerde cel
Cultuurprotocollen
Protocol voor geïmmortaliseerde celkweek
Wij danken Dr. Martin Dorf van Harvard University voor het genereus genereren en verstrekken van de geïmmortaliseerde cellijnen aan de PRF Cell & Tissue Bank. Dank u wel.
PRF-cellijnen werden geïmmortaliseerd met behulp van het volgende protocol:
Retrovirusinfectie
A. Virus produceren: 12-24 uur voor transfectie werden verpakkings-HEK293-cellen geplateerd op een 100-mm plaat bij 60-80% confluentie. Elke plaat werd gecotransfecteerd met 12 μg retroviraal construct pBABE-puro (SV40T) en 12 μg pCL-Ampho Retrovirus Packaging Vector. Het kweekmedium werd 8-10 uur na transfectie afgezogen en vervangen door 10 ml compleet medium. De kweek werd nog eens 48-72 uur geïncubeerd om een optimale virale titer te bereiken.
B. Infecteren van doelcellen: De doelcellen werden 12-18 uur voor infectie op een 100 mm plaat geplateerd. Het medium van de verpakkingscellen werd verzameld en gefilterd door een 0,45-μm celluloseacetaat of polysulfonfilter. Zodra de cellen 40-60% confluent waren, werd 8 ml virusbevattend medium met een uiteindelijke concentratie van 10 μg/ml polybreen toegevoegd. Drie infectierondes werden sequentieel uitgevoerd, met een tussenpoos van ~12 uur. Het medium werd vervangen na 24 uur incubatie.
C. Selectie van stabiele cellijnen: 72 uur na infectie werden de cellen getrypsiniseerd, gesplitst in een verhouding van 1:3 en overgebracht naar twee 100 mm platen in aanwezigheid van 3 μg/ml puromycine, plus één controleplaat zonder antibioticum. Het kweekmedium werd elke 2 of 3 dagen vervangen gedurende ongeveer 2 tot 4 weken om stabiele cellijnen te produceren.
Groeimedia
DMEM- Invitrogen #11960-044 (hoge glucose zonder L-glutamine)
15% FBS foetaal runderserum
1% (1x) Penicilline-streptomycine (Invitrogen#15140-122)
1% (1X) L-glutamine (Invitrogen#25030-081)
0,75 μg/ml puromycine (InvivoGen #ant-pr-1)
Trypsine
Trypsine EDTA C .25% (Invitrogen#25200-056)
Hank's gebalanceerde zoutoplossing
HBSS- (Invitrogen#14170 (1X) (-) calciumchloride, (-)magnesiumchloride, (-) magnesiumsulfaat)
DMSO voor invriezen
Celcultuurkwaliteit DMSO
Cellen komen bevroren aan op droogijs in een concentratie van ongeveer 5 x 105cellen/flesje
Protocol voor het ontdooien van fibroblasten
- Ontdooi de cellen snel in een waterbad van 37°C.
- Veeg de buitenkant van het flesje schoon met 70%-ethanol.
- Breng de ontdooide cellen over in een T25-kolf met 5 ml groeimedium zonder puromycine.
- Plaats de kolf een nacht in een broedstoof bij 37°C.
- Bekijk de volgende dag onder de microscoop of de cellen zich hebben gehecht.
- Verwijder de media en vervang ze door nieuwe groeimedia.
Subculturen van PRF-cellijnen
1) Wanneer cellen gevestigd zijn en groeien, begin dan met het gebruiken van media die 0,75 μg/ml puromycine bevatten. Blijf de cellen in media houden die 0,75 μg/ml puromycine bevatten.
2) Cellen moeten gesplitst worden als ze samenvloeien.
3) Om cellen te splitsen (de opgegeven volumes zijn gebaseerd op de veronderstelling dat de cellen zich in een T25 bevinden):
A. Verwijder de media met behulp van een steriele techniek en spoel de kolf met 2-3 ml steriele HBSS. Verwijder de HBSS en gooi deze weg.
B. Voeg 1 ml trypsine toe en incubeer 2-3 minuten. Cellen moeten onder een omgekeerde microscoop worden gecontroleerd om te bepalen of ze zijn begonnen met ronddraaien, optillen en drijven. Als de cellen na 3 minuten niet loskomen, kunt u nog eens 1-2 minuten incuberen
C. Draai de dop vast en kantel de kolf voorzichtig van links naar rechts om alle cellen los te maken. De kolf kan indien nodig lichtjes op de zijkant worden getikt om de cellen los te maken.
D. Voeg 4 ml nieuwe media toe aan de kolf zodra de cellen drijven om de trypsine te inactiveren. Spoel de zijkanten van de kolf meerdere keren af met de nieuwe media om alle cellen van het plastic en in de oplossing te wassen. Verwijder alle vloeistof met cellen en giet over in een conische 15 ml (of 50 ml als u 3 of meer kolven samenvoegt).
E. Neem met behulp van een steriele techniek een aliquot om te tellen op een hemacytometer.
F. Terwijl u de cellen telt, moet de rest van de oplossing gedurende 5 minuten bij 1000 toeren per minuut in de klinische centrifuge worden gecentrifugeerd.
4) Nadat u uw celtelling hebt berekend, plaatst u de cellen op 2,5 x 105 cellen per T 25 filtertopkolf.
5) De cellen moeten elke 2-3 dagen gevoed worden met vers groeimedium dat 0,75 μg/ml puromycine bevat.
Bevriezen:
Cellen moeten worden ingevroren bij minimaal 5x105 cellen /ml/cryoviaal in groeimedia bevat 10% DMSO en 30% FBS zonder puromycine en vervolgens in een isopropanolvrieskamer bij -80°C gedurende de nacht geplaatst. De volgende dag overbrengen naar vloeibare stikstof.
Voor meer informatie kunt u contact opnemen met:
Leslie B. Gordon, MD, PhD
Hoogleraar kindergeneeskundeonderzoek Warren Alpert Medische faculteit van Brown University en afdeling kindergeneeskunde, Hasbro Children's Hospital, Providence, RI Afdeling anesthesie, Children's Hospital Boston en Harvard Medical School, Boston, MA Medisch directeur, The Progeria Research Foundation
Telefoon: 978-535-2594
Faxen: 508-543-0377
lgordon@progeriaresearch.org
Wendy Norris
Telefoon: 401-274-1122 x 48063
wnorris@brownhealth.org