Célula de fibroblastos
Protocolos de Cultura
Protocolo para fibroblastos de subcultura e congelamento
Meios de crescimento
DMEM - ThermoFisher # 11960-044 (alta glicose sem L-glutamina)
Soro fetal bovino 15% FBS - ThermoFisher # 10437-028
1% (1X) Penicilina-Estreptomicina - ThermoFisher # 15140-122
1% (1X) GlutaMAX - ThermoFisher # 35050-061
Trypsin
Tripsina EDTA C 0.25% (ThermoFisher # 25200-056)
Solução salina equilibrada de Hank
HBSS- (ThermoFisher #14170 (1X) (-) cloreto de cálcio, (-) cloreto de magnésio, (-) sulfato de magnésio
DMSO para congelamento
Classe de cultura de células DMSO - Sigma #D2438
Descongelar linhas de células PRF
- Descongele as células rapidamente em um banho de água 37˚C.
- Limpe a parte externa do frasco com etanol 70%.
- Transfira as células descongeladas para um balão T25 contendo 5 ml de meio de crescimento.
- Coloque o balão na incubadora 37˚C durante a noite.
- No dia seguinte, observe ao microscópio para garantir que as células estejam conectadas.
- Remova a mídia e substitua por uma nova mídia de crescimento.
Subcultura de linhas celulares PRF
- As células devem ser divididas quando confluentes.
- Para dividir células (os volumes fornecidos estão assumindo que as células estão em um T25):
a) Usando uma técnica estéril, remova a mídia e enxágue o frasco com 2-3 ml de HBSS estéril. Remova e descarte o HBSS.
b) Adicione 1 ml de tripsina e incube por 2-3 minutos. As células devem ser verificadas em um microscópio invertido para determinar se elas começaram a arredondar, levantar e flutuar. Se as células não se separarem após 3 minutos, você pode incubar mais 1-2 minutos.
c) Aperte a tampa e incline suavemente o frasco de um lado para o outro para desalojar todas as células. O frasco pode ser batido levemente na lateral para soltar as células, se necessário.
d) Adicione 4 ml do novo meio ao frasco assim que as células estiverem flutuando para inativar a tripsina. Enxágue as laterais do frasco várias vezes com a nova mídia para lavar todas as células do plástico e colocá-las na solução. Remova todas as células que contenham líquido e transfira para uma cônica de 15ml (ou 50ml se você estiver juntando 3 ou mais frascos).
e) Com técnica estéril, retirar uma alíquota para contagem no hemocitômetro.
f) Enquanto você está contando células, o resto da solução deve ser centrifugado na centrífuga clínica por 5 minutos a 1000 rpm. - Após calcular a contagem de células, ploque as células em 2.5 x 105 células por balão superior do filtro T25.
- As células devem ser alimentadas todos os dias 2-3 com meio de crescimento fresco.
Congelando:
As células devem ser congeladas a pelo menos 5 x 105 células / ml / criotubo em meio de crescimento contendo 10% de DMSO e 30% de FBS e subsequentemente colocado em uma câmara de congelamento de isopropanol a -80 -C durante a noite. Transfira para o nitrogênio líquido no dia seguinte.
Para mais informação, por favor contactar:
Leslie B. Gordon, MD, PhD
Professor de Pediatrics Research Warren Alpert Medical School da Brown University e do Departamento de Pediatria, Hasbro Children's Hospital, Providence, RI Department of Anesthesia, Children's Hospital Boston e Harvard Medical School, Boston, MA Diretor Médico, The Progeria Research Foundation
Telefone: 978-535-2594
Fax: 508-543-0377
lgordon@progeriaresearch.org
Wendy Norris
Telefone: 401-274 1122-x 48063
wnorris@lifespan.org